細(xì)胞培養(yǎng)，這些問題您遇到了嗎？

我們在培養(yǎng)細(xì)胞的過程中，多多少少都會遇到一些這樣那樣的問題，今天小編整理的下面這些細(xì)胞培養(yǎng)過程中的問題，您遇到過幾個？您是怎么解決的呢？快和小編一起來看看正確的解決方法吧！

1.培養(yǎng)液pH值變化太快

>>>>原因

CO₂ 張力不對

培養(yǎng)瓶蓋擰得太緊

NaHCO₃ 緩沖系統(tǒng)緩沖力不足

培養(yǎng)液中鹽濃度不正確

細(xì)菌、酵母或真菌污染

>>>>對策

按培養(yǎng)液中 NaHCO3 濃度增加或減少培養(yǎng)箱內(nèi) CO₂ 濃度，2.0 g/L 到 3.7 g/L 濃度 NaHCO₃ 對應(yīng) CO₂ 濃度為 5％ 到 10％?；蛘吒挠貌灰蕾?CO₂ 培養(yǎng)液

松開瓶蓋 1/4 圈

加 HEPES 緩沖液至 10 到 25 mM 終濃度

在 CO₂ 培養(yǎng)環(huán)境中改用基于 Earle’s 鹽配制的培養(yǎng)液，在大氣培養(yǎng)環(huán)境中培養(yǎng)改用 Hank’s 鹽配制的培養(yǎng)液

丟棄培養(yǎng)物或用抗生素除菌

2.培養(yǎng)液出現(xiàn)沉淀，pH 值不變

>>>>原因

用洗滌劑清洗后殘留磷酸鹽將培養(yǎng)基成分沉淀下來

冰凍保存培養(yǎng)液

>>>>對策

用去離子水反復(fù)沖洗玻璃器皿，然后除菌

將培養(yǎng)液加熱到 37 ℃，搖動使其溶解如沉淀仍然存在，丟棄培養(yǎng)液

3.培養(yǎng)液出現(xiàn)沉淀，同時(shí) pH 發(fā)生變化

>>>>原因

細(xì)菌或真菌污染

>>>>對策

丟棄培養(yǎng)物或用抗生素除菌

4.培養(yǎng)細(xì)胞不貼壁

>>>>原因

胰蛋白酶消化過度

支原體污染

培養(yǎng)液中無貼壁因子

>>>>對策

縮短胰蛋白酶消化時(shí)間或降低胰蛋白酶濃度

分離培養(yǎng)物，檢測支原體。清潔支架和培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染，丟棄培養(yǎng)物

改變培養(yǎng)液成分

5.懸浮細(xì)胞成簇

>>>>原因

培養(yǎng)液中含鈣、鎂離子

支原體污染

蛋白酶過度消化使得細(xì)胞裂解釋放 DNA

>>>>對策

用無鈣鎂平衡鹽溶液洗滌細(xì)胞，輕輕吹吸細(xì)胞獲得單細(xì)胞懸液

分離培養(yǎng)物，檢測支原體。如發(fā)現(xiàn)支原體污染，丟棄培養(yǎng)物

用 DNase I 處理細(xì)胞

6.原代細(xì)胞培養(yǎng)物污染

>>>>原因

原代培養(yǎng)組織在進(jìn)入培養(yǎng)前已污染

>>>>對策

培養(yǎng)前用含高濃度抗生素的平衡鹽溶液反復(fù)沖洗組織培養(yǎng)前用含高濃度抗生素的平衡鹽溶液反復(fù)沖洗組織

7.培養(yǎng)細(xì)胞死亡

>>>>原因

培養(yǎng)箱內(nèi)無 CO₂

培養(yǎng)箱內(nèi)溫度波動太大

細(xì)胞凍存或復(fù)蘇過程中損傷

培養(yǎng)液滲透壓不正確

培養(yǎng)液種有毒代謝產(chǎn)物堆積

>>>>對策

檢測培養(yǎng)箱內(nèi) CO₂

檢查培養(yǎng)箱內(nèi)溫度

取新的保存細(xì)胞種

檢測培養(yǎng)液滲透壓。注意：大多數(shù)哺乳動物細(xì)胞能耐受滲透壓為 260~350 mOsm/kg。加入額外試劑如 HEPES 或藥物都有可能影響培養(yǎng)液滲透壓。

換入新鮮培養(yǎng)液

8.培養(yǎng)細(xì)胞生長減慢

>>>>原因

由于更換不同培養(yǎng)液或血清

培養(yǎng)液中一些細(xì)胞生長必需成分如谷氨酰胺或生長因子耗盡或缺乏或已被破壞

培養(yǎng)物中有少量細(xì)菌或真菌污染

試劑保存不當(dāng)

接種細(xì)胞起始濃度太低，細(xì)胞已老化

支原體污染

>>>>對策

比較新培養(yǎng)液與原培養(yǎng)液成分，比較新血清與舊血清支持細(xì)胞生長實(shí)驗(yàn)。讓細(xì)胞逐漸適應(yīng)新培養(yǎng)液

換入新鮮配制培養(yǎng)液。補(bǔ)加谷氨酰胺或生長因子

用無抗生素培養(yǎng)液培養(yǎng)，如發(fā)現(xiàn)污染，丟棄培養(yǎng)物?；蛴每股爻?/span>

血清需保存在 -5 ℃ 到 -20 ℃。培養(yǎng)液需在 2~8 ℃ 避光保存。含血清完全培養(yǎng)液在 2~8 ℃ 保存，并在 2 周內(nèi)用完

增加接種細(xì)胞起始濃度，換用新的保種細(xì)胞

分離培養(yǎng)物，檢測支原體。清潔支架和培養(yǎng)箱。如發(fā)現(xiàn)支原體污染，丟棄培養(yǎng)物

9.保存血清最好的方法？

建議血清應(yīng)保存在 -5 ℃ 至 -2O ℃。然而，若存放于 4 ℃ 時(shí)，請勿超過一個月。若您一次無法用完一瓶，建議您無菌分裝血清至恰當(dāng)?shù)臏缇萜鲀?nèi)，再放回冷凍。

10.如何解凍血清不會使其質(zhì)量受損？

建議將血清從冷凍箱取出后，先置于 2～8 ℃ 冰箱使之融解，然后在室溫下使之全融。但必須注意的是，融解過程中必須規(guī)則地?fù)u晃均勻。

11.血清解凍后有絮狀沉淀物怎么辦？

血清中沉淀物的出現(xiàn)有許多種原因，但最普遍的原因是由于血清中脂蛋白的變性所造成，而血纖維蛋白（形成凝血的蛋白之一）在血清解凍后，也會存在于血清中，亦是造成沉淀物的主要原因之一。

但這些絮狀沉淀物，并不影響血清本身的質(zhì)量。若欲去除這些絮狀沉淀物，可以將血清分裝至無菌離心管內(nèi)，以 400 g 稍微離心，上清液即可接著加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾。我們不建議您以過濾的方法去除這些絮狀沉淀物，因?yàn)樗赡軙枞倪^濾膜。

12.為什么要熱滅活血清？

加熱可以滅活補(bǔ)體系統(tǒng)。激活的補(bǔ)體參與溶解細(xì)胞事件，刺激平滑肌收縮，細(xì)胞和血小板釋放組胺，激活淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。在免疫學(xué)研究，培養(yǎng) ES 細(xì)胞，昆蟲細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞時(shí)，推薦使用熱滅活血清。

13.有必要做熱滅活嗎？

實(shí)驗(yàn)顯示，經(jīng)過正確處理的熱滅活血清，對大多數(shù)的細(xì)胞而言是不需要的。經(jīng)此處理過的血清對細(xì)胞的生長只有微小的促進(jìn)，或完全沒有任何作用，甚至通常因?yàn)楦邷靥幚碛绊懥搜宓馁|(zhì)量，而造成細(xì)胞生長速率的降低。

而經(jīng)過熱處理的血清，沉淀物的形成會顯著的增多，這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察，像是「小黑點(diǎn)」，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在 37 ℃ 環(huán)境中，又會使此沉淀物更增多，使研究者誤認(rèn)為是微生物的分裂擴(kuò)增。

14.儲存冰箱中的胎牛血清出現(xiàn)沉淀？

GIBICO 的胎牛血清沒有預(yù)老化，儲存在 2~8 ℃ 時(shí)，血清中的各種蛋白和脂蛋白（如冷凝集素、纖維蛋白原、玻粘連蛋白等）可能聚集而形成沉淀或可見的混濁。這應(yīng)該不會影響血清的質(zhì)量。推薦在 -20 ℃ 儲存胎牛血清，避免反復(fù)凍融。

15.如何避免沉淀物的產(chǎn)生？

解凍血清時(shí)，請按照所建議的逐步解凍法（-20 ℃ 至 4 ℃ 至室溫），若血清解凍時(shí)改變的溫度太大（如 -20 ℃ 至 37 ℃），實(shí)驗(yàn)顯示非常容易產(chǎn)生沉淀物。

解凍血清時(shí)，請隨時(shí)將之搖晃均勻，使溫度及成分均一，減少沉淀的發(fā)生。

請勿將血清置于 37 ℃ 太久。若在 37 ℃ 放置太久，血清會變得混濁，同時(shí)血清中許多較不穩(wěn)定的成分也會因此受到損害，而影響血清的質(zhì)量。

血清的熱滅活非常容易造成沉淀物的增多，若非必要，可以無須做此步驟。若必須做血清的熱滅活，請遵守 56 ℃，30 分鐘的原則，并且隨時(shí)搖晃均勻。溫度過高，時(shí)間過久或搖晃不均勻，都會造成沉淀物的增多。