2. 抗原修復(fù)不全,換修復(fù)液或加強(qiáng)修復(fù);
3. 組織切片本身這種抗原含量低,設(shè)陽性對(duì)照片;
4. 血清封閉時(shí)間過長;DAB 孵育時(shí)間過短;
6. 細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng)。
(二)非特異性染色的原因(著色一片黃/背景深)
1. 抗體孵育時(shí)間過長,抗體濃度;
2. 多抗易出現(xiàn)非特異性,可選擇單抗;
3. 內(nèi)源性過氧化物酶和生物素滅活不夠;
4. 非特異性組分與抗體結(jié)合,延長血清封閉時(shí)間;
5. DAB 孵育時(shí)間過長或濃度過高;
6. PBS 沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色;
7. 標(biāo)本染色過程中經(jīng)常出現(xiàn)干片;
8. 脫蠟不充分;
9. 二抗與標(biāo)本的內(nèi)源性組織蛋白有交叉反應(yīng)。
(三)染色弱陽性
1. 固定方式不當(dāng)或固定時(shí)溫度過高,影響到抗原的數(shù)量和質(zhì)量;
2. 不適當(dāng)?shù)目乖迯?fù)方式,抗原決定簇暴露不足;
3. 抗體的稀釋度是否過高或者孵育的溫度/時(shí)間不足;
4. 孵育抗體前切片上遺留了過多的沖洗液;
5. 孵育時(shí)切片未放置水平,導(dǎo)致抗體孵育不均勻。
1. 組織固定不及時(shí),抗原擴(kuò)散移位;
2. 抗體選擇錯(cuò)誤;
3. 膜蛋白核質(zhì)染色:抗原修復(fù)過長,導(dǎo)致細(xì)胞膜破壞,膜蛋白轉(zhuǎn)移。
1. 無條帶:抗體用錯(cuò),轉(zhuǎn)膜出錯(cuò),抗原無表達(dá),試劑失效等;
2. 細(xì)微弱帶:上樣量少,抗體濃度低,ECL 發(fā)光液失效等;
3. 高背景:封閉不夠,一抗?jié)舛雀?,洗膜不充分?/p>
4. 非特異性條帶:抗體特異性差,也可能樣品量大,抗體濃度高;
5. 條帶出現(xiàn)邊緣規(guī)則的白圈:轉(zhuǎn)膜時(shí)膜和膠之間有氣泡;
6. 條帶中間出現(xiàn)白色:高濃度 HRP 把底物消耗過快后不發(fā)光;
7. 膜上很多黑點(diǎn):膜上雜質(zhì)與抗體非特異結(jié)合,洗膜充分,封閉液混勻;
8. 條帶拖尾:蛋白裂解不好,蛋白量大,抗體孵育時(shí)間長,濃度高等;
9. 出現(xiàn)非均一性背景:洗抗體和發(fā)光時(shí)膜出現(xiàn)風(fēng)干情況;
10. 條帶彎曲不平整:膠配置不均勻,膠中有氣泡雜質(zhì),玻璃板沒洗干凈,電流不均一等;
11. 條帶蛋白分子量偏高/偏低:分離膠濃度選擇不恰當(dāng),蛋白質(zhì)降解;
12. 所有條帶練成片:上樣量大或電泳中途停止過長,樣品彌散。